这章有点没传上来,等一下。审核出问题了。
先随便传点东西顶一顶。
从黄精中单独提取黄酮类物质通常需要结合黄酮的理化性质(如极性、溶解性、酸碱性等)进行分离纯化。以下是具体步骤和注意事项:
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1. 原料预处理
· 干燥与粉碎:将黄精根茎洗净后烘干(50-60℃避免高温破坏黄酮),粉碎成粗粉(40-60目),增大接触面积。
· 脱脂(可选):若样品脂肪含量高,可用石油醚或正己烷回流脱脂,避免干扰后续提取。
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2. 黄酮的初步提取
方法选择
· 醇提法(常用):
· 溶剂:60-70%乙醇(黄酮苷类)或甲醇(苷元类)。
· 条件:料液比1:10~1:15,60-70℃回流1-2小时,重复2-3次。
· 优点:兼顾极性与非极性黄酮,适合大多数黄精黄酮(如芹菜素、木犀草素衍生物)。
· 热水提取(针对黄酮苷):
· 80-90℃浸提,但可能溶出多糖等杂质,后续纯化压力大。
· 超声/微波辅助:
· 超声(40kHZ, 30分钟)或微波(300W, 5分钟)可提高效率,缩短时间。
浓缩与初步除杂
· 合并提取液,减压浓缩至无醇味,得浸膏。
· 除多糖/蛋白质:
· 加入3-4倍体积95%乙醇沉淀多糖,静置后离心取上清。
· 或用Sevage法(氯仿:正丁醇=4:1)去除蛋白质。
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3. 黄酮的纯化
液液萃取法
· 用乙酸乙酯或正丁醇萃取水相中的黄酮(黄酮苷元更易溶于乙酸乙酯,苷类偏向正丁醇)。
· 重复3-4次,合并有机相,减压浓缩。
柱层析法(关键步骤)
· 吸附剂选择:
· 聚酰胺柱:适合黄酮(氢键吸附),用30%-95%乙醇梯度洗脱(如先水洗去糖,再用50%乙醇洗黄酮)。
· 硅胶柱:对黄酮苷元效果好,洗脱剂用氯仿-甲醇梯度(如10:1→5:1)。
· 大孔树脂(如AB-8、D101):先水洗去糖,再用30-70%乙醇洗脱黄酮。
· 操作要点:
· 上样量不超过柱体积的1/10,流速1-2 BV/h。
· 分段收集,通过TLC(硅胶G板,展开剂:乙酸乙酯-甲酸-水=8:1:1)或HPLC监测目标成分。
重结晶
· 对纯度较高的部分,可用甲醇-水或乙醇-乙酸乙酯混合溶剂重结晶。
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4. 鉴定与验证
· 显色反应:
· 盐酸-镁粉反应(橙红色)、AlCl3反应(黄色荧光)初步确认黄酮。
· HPLC/MS:
· 对照品比对(如芦丁、槲皮素等),或通过质谱分析分子量及结构。
· UV光谱:黄酮类在250-280nm(Band II)、330-380nm(Band I)有特征吸收。
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注意事项
1. 避免氧化:提取过程避光、氮气保护,尤其对含酚羟基的黄酮。
2. 梯度优化:柱层析时需预试验确定最佳洗脱比例。
3. 得率与纯度平衡:高纯度可能损失得率,需根据需求调整(如药用需≥95%)。
4. 中试放大:若工业化生产,需优化溶剂回收、树脂再生等成本问题。
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示例流程(简化版)
黄精粉→70%乙醇回流→浓缩→AB-8树脂(水洗→50%乙醇洗)→浓缩洗脱液→聚酰胺柱(水→30%乙醇)→冷冻干燥→黄酮组分(纯度可达80%以上)。
通过上述方法可高效分离黄精黄酮,后续可结合制备型HPLC或结晶进一步提高纯度。
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从黄精中单独提取黄酮类物质通常需要结合黄酮的理化性质(如极性、溶解性、酸碱性等)进行分离纯化。以下是具体步骤和注意事项:
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1. 原料预处理
· 干燥与粉碎:将黄精根茎洗净后烘干(50-60℃避免高温破坏黄酮),粉碎成粗粉(40-60目),增大接触面积。
· 脱脂(可选):若样品脂肪含量高,可用石油醚或正己烷回流脱脂,避免干扰后续提取。
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2. 黄酮的初步提取
方法选择
· 醇提法(常用):
· 溶剂:60-70%乙醇(黄酮苷类)或甲醇(苷元类)。
· 条件:料液比1:10~1:15,60-70℃回流1-2小时,重复2-3次。
· 优点:兼顾极性与非极性黄酮,适合大多数黄精黄酮(如芹菜素、木犀草素衍生物)。
· 热水提取(针对黄酮苷):
· 80-90℃浸提,但可能溶出多糖等杂质,后续纯化压力大。
· 超声/微波辅助:
· 超声(40kHZ, 30分钟)或微波(300W, 5分钟)可提高效率,缩短时间。
浓缩与初步除杂
· 合并提取液,减压浓缩至无醇味,得浸膏。
· 除多糖/蛋白质:
· 加入3-4倍体积95%乙醇沉淀多糖,静置后离心取上清。
· 或用Sevage法(氯仿:正丁醇=4:1)去除蛋白质。
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3. 黄酮的纯化
液液萃取法
· 用乙酸乙酯或正丁醇萃取水相中的黄酮(黄酮苷元更易溶于乙酸乙酯,苷类偏向正丁醇)。
· 重复3-4次,合并有机相,减压浓缩。
柱层析法(关键步骤)
· 吸附剂选择:
· 聚酰胺柱:适合黄酮(氢键吸附),用30%-95%乙醇梯度洗脱(如先水洗去糖,再用50%乙醇洗黄酮)。
· 硅胶柱:对黄酮苷元效果好,洗脱剂用氯仿-甲醇梯度(如10:1→5:1)。
· 大孔树脂(如AB-8、D101):先水洗去糖,再用30-70%乙醇洗脱黄酮。
· 操作要点:
· 上样量不超过柱体积的1/10,流速1-2 BV/h。
· 分段收集,通过TLC(硅胶G板,展开剂:乙酸乙酯-甲酸-水=8:1:1)或HPLC监测目标成分。
重结晶
· 对纯度较高的部分,可用甲醇-水或乙醇-乙酸乙酯混合溶剂重结晶。
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4. 鉴定与验证
· 显色反应:
· 盐酸-镁粉反应(橙红色)、AlCl3反应(黄色荧光)初步确认黄酮。
· HPLC/MS:
· 对照品比对(如芦丁、槲皮素等),或通过质谱分析分子量及结构。
· UV光谱:黄酮类在250-280nm(Band II)、330-380nm(Band I)有特征吸收。
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注意事项
1. 避免氧化:提取过程避光、氮气保护,尤其对含酚羟基的黄酮。
2. 梯度优化:柱层析时需预试验确定最佳洗脱比例。
3. 得率与纯度平衡:高纯度可能损失得率,需根据需求调整(如药用需≥95%)。
4. 中试放大:若工业化生产,需优化溶剂回收、树脂再生等成本问题。
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示例流程(简化版)
黄精粉→70%乙醇回流→浓缩→AB-8树脂(水洗→50%乙醇洗)→浓缩洗脱液→聚酰胺柱(水→30%乙醇)→冷冻干燥→黄酮组分(纯度可达80%以上)。
通过上述方法可高效分离黄精黄酮,后续可结合制备型HPLC或结晶进一步提高纯度。
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