这章有点没传上来,等一下。审核出问题了。

  先随便传点东西顶一顶。

  从黄精中单独提取黄酮类物质通常需要结合黄酮的理化性质(如极性、溶解性、酸碱性等)进行分离纯化。以下是具体步骤和注意事项:

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  1. 原料预处理

  · 干燥与粉碎:将黄精根茎洗净后烘干(50-60℃避免高温破坏黄酮),粉碎成粗粉(40-60目),增大接触面积。

  · 脱脂(可选):若样品脂肪含量高,可用石油醚或正己烷回流脱脂,避免干扰后续提取。

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  2. 黄酮的初步提取

  方法选择

  · 醇提法(常用):

  · 溶剂:60-70%乙醇(黄酮苷类)或甲醇(苷元类)。

  · 条件:料液比1:10~1:15,60-70℃回流1-2小时,重复2-3次。

  · 优点:兼顾极性与非极性黄酮,适合大多数黄精黄酮(如芹菜素、木犀草素衍生物)。

  · 热水提取(针对黄酮苷):

  · 80-90℃浸提,但可能溶出多糖等杂质,后续纯化压力大。

  · 超声/微波辅助:

  · 超声(40kHZ, 30分钟)或微波(300W, 5分钟)可提高效率,缩短时间。

  浓缩与初步除杂

  · 合并提取液,减压浓缩至无醇味,得浸膏。

  · 除多糖/蛋白质:

  · 加入3-4倍体积95%乙醇沉淀多糖,静置后离心取上清。

  · 或用Sevage法(氯仿:正丁醇=4:1)去除蛋白质。

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  3. 黄酮的纯化

  液液萃取法

  · 用乙酸乙酯或正丁醇萃取水相中的黄酮(黄酮苷元更易溶于乙酸乙酯,苷类偏向正丁醇)。

  · 重复3-4次,合并有机相,减压浓缩。

  柱层析法(关键步骤)

  · 吸附剂选择:

  · 聚酰胺柱:适合黄酮(氢键吸附),用30%-95%乙醇梯度洗脱(如先水洗去糖,再用50%乙醇洗黄酮)。

  · 硅胶柱:对黄酮苷元效果好,洗脱剂用氯仿-甲醇梯度(如10:1→5:1)。

  · 大孔树脂(如AB-8、D101):先水洗去糖,再用30-70%乙醇洗脱黄酮。

  · 操作要点:

  · 上样量不超过柱体积的1/10,流速1-2 BV/h。

  · 分段收集,通过TLC(硅胶G板,展开剂:乙酸乙酯-甲酸-水=8:1:1)或HPLC监测目标成分。

  重结晶

  · 对纯度较高的部分,可用甲醇-水或乙醇-乙酸乙酯混合溶剂重结晶。

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  4. 鉴定与验证

  · 显色反应:

  · 盐酸-镁粉反应(橙红色)、AlCl3反应(黄色荧光)初步确认黄酮。

  · HPLC/MS:

  · 对照品比对(如芦丁、槲皮素等),或通过质谱分析分子量及结构。

  · UV光谱:黄酮类在250-280nm(Band II)、330-380nm(Band I)有特征吸收。

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  注意事项

  1. 避免氧化:提取过程避光、氮气保护,尤其对含酚羟基的黄酮。

  2. 梯度优化:柱层析时需预试验确定最佳洗脱比例。

  3. 得率与纯度平衡:高纯度可能损失得率,需根据需求调整(如药用需≥95%)。

  4. 中试放大:若工业化生产,需优化溶剂回收、树脂再生等成本问题。

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  示例流程(简化版)

  黄精粉→70%乙醇回流→浓缩→AB-8树脂(水洗→50%乙醇洗)→浓缩洗脱液→聚酰胺柱(水→30%乙醇)→冷冻干燥→黄酮组分(纯度可达80%以上)。

  通过上述方法可高效分离黄精黄酮,后续可结合制备型HPLC或结晶进一步提高纯度。
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